Bìa tạp chí

Website: https://vjfc.nifc.gov.vn/

009bet

Tiềm năng sản xuất protein đơn bào bởi nấm men phân lập từ thực phẩm lên men

Hoàng Quốc Việt Lê Thị Hoàng Dung Phạm Thành Lộc Nguyễn Thị Huế Phạm Thị Huệ Nguyễn Hồng Minh Trần Hữu Phong
Ngày nhận: 30/11/2025
Đã sửa đổi: 12/12/2025
Ngày chấp nhận: 31/03/2026
Ngày đăng: 28/06/2026

Chi tiết

Các trích dẫn
Hoàng Quốc Việt, Lê Thị Hoàng Dung, Phạm Thành Lộc, Nguyễn Thị Huế, Phạm Thị Huệ, Nguyễn Hồng Minh, Trần Hữu Phong. "Tiềm năng sản xuất protein đơn bào bởi nấm men phân lập từ thực phẩm lên men". Tạp chí Kiểm nghiệm và An toàn thực phẩm. tập 9 - số 2, pp. 113-122, 2026
Phát hành
PP
113-122
Counter
2

Main Article Content

Tóm tắt

Trong nghiên cứu này, 36 chủng nấm men được phân lập từ các nguồn thực phẩm lên men thu thập được ở các khu vực khác nhau của miền Bắc Việt Nam. Quá trình sàng lọc đã thu được 15/36 chủng có khả năng sinh trưởng tốt với khối lượng khô tế bào (CDW) dao động từ 10-14 g/L, và 10/36 chủng có tiềm năng sản xuất protein đơn bào với tổng hàm lượng protein (TPC) vượt quá 57% (g/100 g khối lượng khô tế bào) sau 24 giờ nuôi cấy trong môi trường lỏng YPD. Chủng nấm men YPI-Y2 (với CDW đạt 14,03 g/L; TPC đạt 62,3%) được xác định là có quan hệ gần gũi với loài Pichia kudriavzevii (99,77%) dựa trên phân tích và so sánh trình tự ITS rDNA. Các đặc điểm dinh dưỡng và nuôi cấy của chủng Pichia kudriavzevii YPI-Y2, hướng tới sản xuất sinh khối tế bào và tích lũy protein, đã được xác định. Nhiệt độ nuôi cấy tối ưu và điều kiện pH ban đầu của môi trường để sinh trưởng và tích lũy protein của chủng nấm men YPI-Y2 lần lượt là 30°C và 6,5, trong khi nguồn carbon phù hợp được xác định là D-fructose. Đồng thời, chủng nấm men này vẫn thể hiện khả năng sinh trưởng và tích lũy protein tốt trên các nguồn nitơ vô cơ (ngoại trừ urê với 35,62% TPC). Dưới điều kiện nuôi cấy và dinh dưỡng thích hợp, giá trị CDW và TPC đạt lần lượt 16,12 g/L và 66,62% (g/100g CDW).

Từ khóa:

Protein đơn bào, Pichia kudriavzevii, nấm men, thực phẩm lên men, YPI-Y2

Trích dẫn

[1]. Y. P. Li, F. Ahmadi, K. Kariman et al., "Recent advances and challenges in single cell protein (SCP) technologies for food and feed production," npj Science of Food, vol. 8, 2024.
[2]. M. E. Jach, A. Serefko, M. Ziaja, and M. Kieliszek, "Yeast protein as an easily accessible food source," Metabolites, vol. 12, no. 1, 2022.
[3]. F. Samiksha, E. M. D. San Valentin, G. Li, M. Blazer, T. S. McCormick, and M. Ghannoum, "A narrative review on the functional applications, safety, and probiotic characteristics of Pichia," Nutrients, vol. 17, 2025.
[4]. T. H. T. Ngo and V. H. Vu, "Study on optimal fermentation conditions for the high biomass production of Saccharomyces cerevisiae SC2.75," Vietnam Journal of Biotechnology, vol. 15, no. 3, pp. 581-588, 2017 (in Vietnamese).
[5]. T. M. H. Pham, T. T. H. Nguyen, and N. U. Le, "Production of Saccharomyces cerevisiae biomass from Ulva lactuca algae hydrolysis and experiments for use in commercial Pacific oyster farming," Journal of Science of Can Tho University, vol. 60, Special issue SDMD, pp. 138-145, 2024 (in Vietnamese).
[6]. Ministry of Industry and Trade, "Utilizing by-products of the paper industry to produce animal feed," 2025. [Online]. Available: https://nq57.igip.gov.vn/tin-tuc/t3207. [Accessed: Dec. 26, 2025] (in Vietnamese).
[7]. Y. Chu et al., "Advances in the application of the non-conventional yeast Pichia kudriavzevii in food and biotechnology industries," Journal of Fungi, vol. 9, no. 170, 2023.
[8]. L. E. Epperson and M. Strong, "A scalable, efficient, and safe method to prepare high quality DNA from mycobacteria and other challenging cells," Journal of Clinical Tuberculosis and Other Mycobacterial Diseases, vol. 19, 2020.
[9]. T. J. White, T. D. Bruns, S. B. Lee, and J. W. Taylor, "Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics," in PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, M. A. Innis, D. H. Gelfand, J. J. Sninsky, and T. J. White, Eds. New York, NY, USA: Academic Press, 1990, pp. 315–322.
[10].L. Newman, A. L. J. Duffus, and C. Lee, "Using the free program MEGA to build phylogenetic trees from molecular data," American Biology Teacher, vol. 78, no. 7, pp. 608-612, 2016.
[11].D. Van-Thuoc and J. Quillaguamán, "Improving culture conditions for poly(3-hydroxybutyrate-co-3hydroxyvalerate) production by Bacillus sp. ND153, a bacterium isolated from a mangrove forest in Vietnam," Annals of Microbiology, vol. 64, pp. 991-997, 2014.
[12].Vietnam Institute of Quality Standards, Food and animal feed - General guidance on nitrogen content determination by Kjeldahl method, TCVN 10034:2013 (ISO 1871:2009), 2013 (in Vietnamese).
[13].AOAC International, "AOAC Official Method 2001.11: Protein (Crude) in Animal Feed, Forage, Grain, and Oilseeds - Block Digestion Method Using Copper Catalyst and Steam Distillation into Boric Acid," in Official Methods of Analysis of AOAC International, 2023.
[14].P. Rachamontree, T. Phusantisampan, N. Woravutthikul, P. Pornwongthong, and M. Sriariyanun, "Selection of Pichia kudriavzevii strain for the production of single-cell protein from cassava processing waste," International Journal of Biological, Food, Veterinary and Agricultural Engineering, vol. 9, no. 5, 2015.
[15].K. Nayana, D. Vidya, K. Soorya et al., "Effect of volume and surface area on growth and productivity of microalgae in culture system," BioEnergy Research, vol. 16, pp. 1013-1025, 2022.
[16].Q. Xu, W. Huang, Y. Li et al., "Isolation and identification of epiphytic Pichia kudriavzevii from loquat peels and investigation of its fermentation characteristics for liquor production," Archives of Microbiology, vol. 206, no. 1, 2024.
[17].N. T. T. Thu et al., "Evaluation of polyhydroxyalkanoate (PHA) synthesis by Pichia sp. TSLS24 yeast isolated in Vietnam," Scientific Reports, vol. 13, 2023.
[18].V. L. Nieto-Sarabia, C. B. Ballinas-Cesatti, G. Melgar-Lalanne, E. Cristiani-Urbina, and L. Morales Barrera, "Isolation, identification, and kinetic and thermodynamic characterization of a Pichia kudriavzevii yeast strain capable of fermentation," Food and Bioproducts Processing, vol. 131, pp. 109-124, 2022.
[19].N. Chamnipa, S. Thanonkeo, P. Klanrit, and P. Thanonkeo, "The potential of the newly isolated thermotolerant yeast Pichia kudriavzevii RZ8-1 for high-temperature ethanol production," Brazilian Journal of Microbiology, vol. 49, no. 2, pp. 378-391, 2018.
[20].T. Xu et al., "Fungus Pichia kudriavzevii XTY1 and heterotrophic nitrifying bacterium Enterobacter asburiae GS2 cannot efficiently transform organic nitrogen via hydroxylamine and nitrite," Frontiers in Microbiology, vol. 13, 2022.
[21].M. Jeppsson, B. Johansson, B. Hahn-Hägerdal, and M. F. Gorwa-Grauslund, "Reduced oxidative pentose phosphate pathway flux in recombinant xylose-utilizing Saccharomyces cerevisiae strains improves the ethanol yield from xylose," Applied and Environmental Microbiology, vol. 68, no. 4, pp. 1604-1609, 2002.
[22].Z. Jiang et al., "Glucose-6-phosphate dehydrogenases: The hidden players of plant physiology," International Journal of Molecular Sciences, vol. 23, no. 24, 2022.
[23].L. E. Díaz-Nava, N. Montes-García, J. M. Domínguez, and M. G. Aguilar-Uscanga, "Effect of carbon sources on the growth and ethanol production of native yeast Pichia kudriavzevii ITV-S42 isolated from sweet sorghum juice," Bioprocess and Biosystems Engineering, vol. 40, no. 7, pp. 1069-1077, 2017.
[24].M. Koutinas, M. Patsalou, S. Stavrinou, and I. Vyrides, "High temperature alcoholic fermentation of orange peel by the newly isolated thermotolerant Pichia kudriavzevii KVMP10," Letters in Applied Microbiology, vol. 62, no. 1, pp. 75-83, 2016.

 Gửi bài